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Química industrial
1. Investigar la técnica (condiciones en que se realiza
el análisis y se toma la muestra) de análisis de DBO o
DQO. Tomar una de las maneras.
DBO
La Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO) es el método más tradicional que mide la cantidad de oxígeno que consumen los microorganismos al proliferar en el agua residual y alimentarse de su materia orgánica. Esto se utiliza con el propósito de evaluar el impacto en la fauna acuática de cuerpos receptores y también representa bien cuánto se puede prestar el agua como foco de infección, ya que diferentes compuestos de carbono tienen diferente valor como sustratos para el crecimiento de microorganismos.
Las condiciones estándar del ensayo incluyen incubación en la oscuridad a 20ºC por un tiempo determinado, generalmente cinco días. Las condiciones naturales de temperatura, población biológica, movimiento del agua, luz solar y la concentración de oxígeno no pueden ser reproducidas en el laboratorio. Los resultados obtenidos deben tomar en cuenta los factores anteriores para lograr una adecuada interpretación.
La técnica de dilución, son los resultados más acertados se obtienen con diluciones de muestra en las que los valores de OD residual son por lo menos 1 mg/L y un consumo de OD de por lo menos 2 mg/L después de los 5 días de incubación. La experiencia con muestras de diferente origen permiten optimizar el número de diluciones requeridas; la correlación de la DQO con la DBO puede constituir una guía efectiva para la selección de las diluciones más convenientes. Si no se dispone de esta metodología, se pueden emplear las diluciones de 0,0 a 1,0 % para efluentes líquidos industriales, 1 a 5 % para efluentes
industriales no tratados y decantados, 5 a 25 % para efluentes con tratamiento secundario o biológico, y 25 a 100 % para corrientes contaminadas.
Las diluciones se efectúan en probetas y luego se transfieren a las botellas de DBO, o se preparan directamente en las botellas. Cualquiera de los dos métodos de dilución puede combinarse con cualquier técnica para medición de OD. El número de botellas a ser preparadas para cada dilución depende de la técnica de análisis del OD y del número de réplicas deseadas. Cuando sea necesaria la inoculación, agregar la semilla directamente al agua de dilución o a cada probeta o botella de DBO antes de la dilución. La inoculación en las probetas evita la disminución de la relación semilla/muestra cuando se hace un incremento en las diluciones.
3. Buscar información sobre los parámetros
principales.
Los recipientes para las muestras generalmente están hechos de plástico o de vidrio, y se utilizan de acuerdo con la naturaleza de la muestra y sus componentes. Los recipientes de vidrio son inconvenientes para muestras destinadas a ser analizadas por metales traza; el vidrio libera silicio y sodio, a su vez, pueden adsorber trazas de metales contenidas en la muestra. Por otra parte los recipientes de plástico -excepto los teflonados (politetrafluoroetileno, TFE)- deben descartarse para muestras que contengan compuestos orgánicos, estos materiales liberan sustancias del plástico (por ejemplo, ésteres de ftalato del plástico) y a su vez disuelven algunos compuestos orgánicos volátiles de la muestra. Las tapas de los envases, generalmente de plástico, también pueden ser un problema, por lo que se debe usar empaques o séptum de metal o TFE. Para situaciones críticas, es adecuada la inclusión de un blanco del recipiente para
se trata de metales traza o compuestos orgánicos en concentraciones traza. En algunas determinaciones como los análisis para plomo, estos pueden ser invalidados por la contaminación que se puede presentar en tales procesos. Cada muestra debe ser tratada en forma individual, teniendo en cuenta las sustancias que se van a determinar, la cantidad y naturaleza de la turbidez presente, y cualquier otra condición que pueda influenciar los resultados.
Ejemplo de cómo tomar muestra DBO
Las muestras para determinación de la DBO se deben analizar con prontitud; si no es posible, refrigerarlas a una temperatura cercana al punto de congelación, ya que se pueden degradar durante el almacenamiento, dando como resultado valores bajos. Sin embargo, es necesario mantenerlas el mínimo tiempo posible en almacenamiento, incluso si se llevan a bajas temperaturas. Antes del análisis calentarlas a 20ºC.
Muestras simples. Si el análisis se emprende en el intervalo de 2 h después de la reco-lección no es necesario refrigerarlas; de lo contrario, guardar la muestra a 4ºC o menos; reportar junto con los resultados el tiempo y la temperatura de almacenamiento. Bajo ningún concepto iniciar el análisis después de 24 h de haber tomado la muestra; las muestras empleadas en la evaluación de las tasas retributivas o en otros instrumentos normativos, deben ser analizadas antes de que transcurran 6 h a partir del momento de la toma.
Muestras compuestas. Mantener las muestras a 4ºC o menos durante el proceso de composición, que se debe limitar a 24 h. Aplicar los mismos criterios que para las muestras sencillas, contando el tiempo transcurrido desde el final del período de composición. Especificar el tiempo y las condiciones de almacenamiento como parte de los resultados.
4. Análisis crítico sobre la información que dan
distintos sectores involucrados en la contaminación
del rio Uruguay por las distintas fronteras (vertientes,
investigar cuánto mide cada uno de ellos y su nivel de
contaminación)
La Comisión Administradora del Río Uruguay (CARU) dio a conocer los resultados de los análisis microbiológicos de los últimos muestreos llevados a cabo en distintas playas monitoreadas por ese organismo. Advirtió que “las aguas del río homónimo están altamente contaminadas con bacterias que en número superan largamente el máximo permitido”.
Concordia registra en sus playas entre 100 y 9.000 coliformes fecales por cada 100 mililitros de agua, con un promedio de 536 UFC/100 ml, un poco más del doble que el permitido.
San José registró en sus aguas entre 250 y 9.300 coliformes fecales cada 100 mililitros, y una media geométrica de 1. (9 veces más que el límite); entre 110 y 2.300 escherichia coli cada 100 mililitros, con una media de 597 (4 veces más); y enterococos entre 10 y 412 UFC/100 ml, y 163 de media geométrica (casi cinco veces lo normal).
Colón presenta entre 390 y 6.400 coliformes fecales cada 100 mililitros, ocho veces más de lo permitido ya que tiene una media geométrica de 1.634 UFC/100 ml.
En Concepción del Uruguay, los coliformes fecales se encontraron entre 140 y 2.300 UFC/100 ml, con una media de 396 UFC/100 ml; la bacteria escherichia coli se ubicó entre 25 y 700 UFC/100 ml, con una media geométrica de 120, por debajo del límite establecido en 126 UFC/100 ml; mientras que los enterococos aparecieron entre 8 y 420 UFC/100 ml, con una media ubicada en el nivel permitido.
