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GUIA DE BIOQUIMICA AYUDA PARA ESTUDIAR, Apuntes de Bioquímica Médica

lee detenidamente PARA PODER REALIZAR LAS GUÍAS DE BIOQUIMICA

Tipo: Apuntes

2018/2019

Subido el 13/04/2019

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alejandro-salas-lopez 🇵🇪

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UNIVERSIDAD PRIVADA SAN JUAN BAUTISTA
FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD
ESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA HUMANA
CURSO DE BIOQUÍMICA Y NUTRICIÓN
GUÍA DE PRÁCTICAS
2018-I
Dr. José Chuquipiondo Ludeña
Dr. José Martín Chuquipiondo Arana
LIMA PERU
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¡Descarga GUIA DE BIOQUIMICA AYUDA PARA ESTUDIAR y más Apuntes en PDF de Bioquímica Médica solo en Docsity!

UNIVERSIDAD PRIVADA SAN JUAN BAUTISTA

FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD

ESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA HUMANA

CURSO DE BIOQUÍMICA Y NUTRICIÓN

GUÍA DE PRÁCTICAS

2018 - I

Dr. José Chuquipiondo Ludeña

Dr. José Martín Chuquipiondo Arana

LIMA – PERU

NORMAS PARA EL USO Y TRABAJO EN EL LABORATORIO

  1. Realizar las prácticas de laboratorio con el debido interés y responsabilidad.
  2. Presentarse vestido correctamente con su correspondiente guardapolvo y distintivo de la Universidad.
  3. Poner maletines y mochilas en el estante, llevar a las mesas solo lapiceros y cuadernos.
  4. Está terminantemente prohibido beber o comer dentro del laboratorio.
  5. Leer cuidadosamente la guía de práctica y tener en cuenta las indicaciones de los profesores de práctica sobre el uso del material y equipos de laboratorio, así como el orden, limpieza y seguridad que debe mantenerse.
  6. Por cada práctica de laboratorio cada mesa de trabajo presentará un único informe, el cual consta de las siguientes partes: - Carátula. - Objetivos. - Marco Teórico. - Desarrollo Experimental. - Discusión de los resultados. - Conclusiones. - Cuestionario. - Bibliografía Dicho informe se presentará en la siguiente práctica en el horario y grupo Respectivo.
  7. El inicio de la pràctica es en la hora exacta programada. Se tendrà una tolerancia de 10 minutos, luego de ese lapso de tiempo no se podrà ingresar al laboratorio, por lo tanto se le considerarà como una inasistencia y no tendrà derecho a nota de informe de pràcticas.
  8. Las inasistencias en las prácticas no son recuperables en ninguno de los grupos, calificándose al alumno con nota cinco (05). Aquel alumno que acumule 30% de inasistencias no tiene derecho a nota práctica.
  9. Cada alumno será integrante de una mesa de trabajo, a la cual pertenecerá a lo largo del semestre académico.
  10. Por mesa de trabajo, será nombrado un responsable que se hará cargo del material y equipos recibidos así como de la presentación de los informes.
  11. En caso de daño, deterioro o pérdida del material y/o equipos, el responsable de mesa informará del hecho al profesor de prácticas, TODO GRUPO ES RESPONSABLE DEL DAÑO CAUSADO, y deberá repararlo a la brevedad posible, no más de una (01) semana después del incidente.
  12. Al final de la práctica, se procederá a limpiar el material usado, con el fin de entregarlo en las mismas condiciones en las que fueron recibidos, caso contrario se le descontará un punto en la nota de informe a todo el grupo.
  13. Una vez limpio el material, el responsable de mesa lo devolverá a la persona encargada del laboratorio.
  14. El laboratorio deberá quedar completamente limpio, las mesas secas y limpias, debiendo arrojar todos los desechos al tacho de basura.

el observador. Este número varía de acuerdo con la concentración del soluto y el espesor del recipiente que contiene la solución, estos factores están considerados en la “Ley de Lambert y Beer”, que rige los principios de la Espectrofotometría y cuyas formas de expresión son: Log (Io/I) = E. b. c = A = D.O. Donde: Io = Intensidad de la luz incidente. I = Intensidad de la luz transmitida. E = Coeficiente de extinción molar, valor constante dependiendo de la naturaleza de la Sustancia y de la longitud de onda I = Espesor del recipiente en cm. C = Concentración de la solución. A = D.O. = Absorbancia (A) aumenta conforme disminuye la Transmitancia (T) y la relación entre ambas es logarítmica. CALCULO DE LA CONCENTRACIÓN DE UNA SOLUCION PROBLEMA: Para calcular la concentración de una solución problema con el empleo de un Espectrofotómetro, existen dos formas:

  • Método de la curva standard o curva de calibración.
  • Factor de calibración. a) CURVA STANDARD.- Este método consiste en utilizar varios estándares de concentraciones conocidas y progresivas para luego construir un gráfico en un sistema de coordenadas en el que se colocan las lecturas en las ordenadas (Eje Y) y las concentraciones en las abscisas (Eje X). En la recta obtenida (Función lineal), se puede extrapolar la absorbancia o densidad óptica de la muestra problema, hallando la concentración de la misma en el eje de las abscisas. b) FACTOR DE CALIBRACIÓN.- (Fc), El factor de calibración es un término que se relaciona con la concentración de una sustancia con su absorbancia, es decir la intensidad que absorbe una sustancia de concentración conocida (Standard o Patrón).

Así tenemos: Donde: Fc = factor de calibración. A = absorbancia del tubo standard. [Standard] = concentración del standard. Con el factor de calibración se puede fácilmente determinar la concentración de una muestra desconocida o problema (MP), conociendo su absorbancia. Si la muestra problema y el standard son procesados de la misma manera (diluciones) se podrá usar directamente la siguiente fórmula: [ MP ] = A. Fc Si la muestra problema sufre diluciones previas se encontrará el factor de dilución (Fd) que es matemáticamente la inversa de la dilución (dil) y esta a su vez es: Dil = Vol / Vol (^) o Donde: Vol = Volumen de la muestra problema tomada para hacer la dilución. Vol (^) o = Volumen total. Para este segundo caso cuando se quiere saber la concentración de una muestra problema se procederá usando la siguiente fórmula: [ MP ] = A. Fc. dil Fc = [ Standard ] / A

CUESTIONARIO:

1.- Explique el mecanismo de funcionamiento de un espectrofotómetro. 2.- ¿Qué diferencias existen entre un fotocolorímetro y un espectrofotómetro?. 3.- Grafique el espectro de luz, tanto en el rango visible como no visible con sus respectivas longitudes de ondas. 4.- Qué relación matemática existe entre Absorbancia y Transmitancia? 5.- Construya una curva de calibración con los siguientes valores: Standard 1 Standard 2 Standard 3 Standard 4 Standard 5 Concentration 5 mg/dl 10 mg/dl 20 mg/dl 30 mg/dl 40 mg/dl Absorbancia 0.025 0.050 0.100 0.150 0. Con la curva obtenida hallar la concentración de las siguientes muestras, sabiendo que sus absorbancia fueron: Muestra A........................0. Muestra B........................0. Muestra C........................0.

UNIVERSIDAD PRIVADA SAN JUAN BAUTISTA

FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD

ESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA HUMANA

CURSO: BIOQUÍMICA Y NUTRICIÓN

PRÁCTICA No 2 LOS AMINOÁCIDOS Y LAS PROTEINAS COMO ELECTROLITOS: SU CAPACIDAD AMORTIGUADORA EN EL ORGANISMO HUMANO FUNDAMENTO BIOQUIMICO: Una propiedad importante de los aminoácidos, consecuencia del hecho de que todos ellos tienen grupos carboxilo (-COOH) y grupos amino (-NH 2 ) es su conducto como electrolitos. Es costumbre considerar los grupos COOH como de naturaleza acídica y los grupos NH 2 como de carácter básico. Hemos estudiado en las clases teóricas el comportamiento de los aminoácidos como iones dipolares y la conducta de ellos durante su titulación con ácido y álcalis de modo que se comportan como verdaderas sustancias tampones, amortiguadores ò buffers, para el sostenimiento del pH del medio interno dentro de estrechos límites (7.35 a 7.45). Explicamos también el comportamiento amortiguador del ion dipolar glicina al añadirle iones H+ o al añadirle OH- impidiendo las variaciones bruscas del pH sanguíneo. La representación de un aminoácido tal como la glicina por la fórmula NH 2 CH 2 COOH sugiere que se trata de una sustancia en la que el grupo amino actúa como una base conjugada y el grupo COOH como un ácido. Se ha observado, sin embargo, que esta formulación no es la correcta del estado iónico de un aminoácido en solución acuosa. La verdadera representación es aquella que dimos del ion dipolar (A) y que es la siguiente: (Estructura A) H H R C COO- R C COOH Estructura (A) NH 3 Estructura (B) NH 2 Y que es la forma en la cual se encuentran en el torrente circulatorio, es decir, al pH fisiológico (7.4) los grupos carboxilo existen como la base conjugada, esto es, como ión carboxílico R-COO-; y al mismo pH, la mayoría de los grupos amínicos están predominantemente en la forma protónica R-NH 3 + La estructura (A) iónica es la prevalente en la sangre y en la mayoría de los tejidos. La estructura (B) no puede existir a ningún pH. La conveniencia nos

SAL

pH = pK + log ------------ ACIDO A partir de esta ecuación se deduce que el pH de una disolución tampón depende de la naturaleza del ácido que la integra y de la proporción entre la sal y el ácido (logaritmo de la relación entre ambos) y no de las concentraciones absolutas de cada uno de estos componentes. La eficacia amortiguadora es máxima cuando el cociente de la relación sal/ácido es próximo a la unidad. El objetivo de la presente práctica es demostrar la capacidad tampón de un sistema amortiguador empleando un ácido débil y la sal del ácido débil y estudiar la curva de titulación ò valoración de un ácido débil HA, como el ácido acético (0.1N) y una base fuerte NaOH 0.1N y las variaciones del pH con respecto a diferentes proporciones relativas entre la sal y el ácido de una solución tampón. (el pK del ácido acético es 4.76) antes de agregar la base, el pH se debe solamente a la presencia del ácido. Pero tan pronto como se añade algo de la base (NaOH 0.1N), ésta reacciona con una cantidad equivalente del ácido y forma una cantidad equivalente de sal y agua. El ácido débil más su sal disuelta constituyen una solución tampón (par amortiguador), cuyo pH puede calcularse mediante el uso de la ecuación de H-H: pH = pK – log sal/ácido. Se determinará el pH con el potenciómetro y se evaluarán los cambios en el pH con la adición de volúmenes definidos de una base conocida (NaOH 0.1N). Graficaremos en un sistema de coordenadas cartesianas los valores de pH vs los ml de base agregados y obtendremos así la curva de titulación para el ácido. Se empleará el equipo potenciómetro para determinar el pH, instrumento que determina el pH en función de la fuerza electromotriz de una celda formada por un electrodo de referencia, la solución problema y un electrodo de vidrio muy sensible a los hidrogeniones. MATERIALES, EQUIPOS Y REACTIVOS: Potenciómetro. Beakers de 50 ml de vidrio (11 para cada mesa de trabajo). Baguetas de vidrio (3 por cada mesa). Pipetas de 10 ml graduadas 1/10 (3 por cada mesa). Agua destilada. Solución de CH 3 - COOH 0.1N. Solución de NaOH 0.1N. Papel milimetrado ò cuadriculado.

PARTE EXPERIMENTAL:

Mezclar los volúmenes de CH 3 - COOH 0.1N y de NaOH 0.1N con agua destilada señalados en la tabla siguiente, mezclar bien y luego medir el pH en cada uno de los 11 Beakers con el potenciómetro: Beaker Nº Acido acético 0.1 N (ml) NaOH 0.1N (ml) Agua destilada (ml) pH 1 10 0 10 2 10 1 9 3 10 2 8 4 10 3 7 5 10 4 6 6 10 5 5 7 10 6 4 8 10 7 3 9 10 8 2 10 10 9 1 11 10 10 0 En cada mesa los alumnos construirán su gráfica de valoración colocando en las coordenadas los valores de pH en orden creciente y en el eje de las abscisas los volúmenes de NaOH 0.1N añadidos en cada Beakers. pH ml NaOH añadido CUESTIONARIO: 1.- Graficar la curva de valoración del ácido acético 0.1N vs. NaOH 0.1N. 2.- Identificar el punto de semi-valoraciòn y máxima capacidad tampón. 3.- Explique que es un par tampón, como funciona y porqué las proteínas sanguíneas son amortiguadores. 4.- Describa las principales sustancias amortiguadoras del organismo humano.

  1. Concentración de la enzima [E]
  2. pH del medio
  3. Influencia de la temperatura
  4. Efecto de inhibidores y activadores En la presente práctica estudiaremos el efecto de estos factores sobre la actividad enzimática de la amilasa salival sobre el almidón. La amilasa es una enzima que degrada moléculas hidrocarbonadas complejas en componentes más pequeños, tiene un PM de 40,000 a 50,000 daltons. Es producida por el páncreas exocrino y las glándulas salivales para ayudar a digerir el almidón. La amilasa humana se denomina “alfa-amilasa” por su capacidad para romper los enlaces polisacáridos alfa-1,4 al azar. Los enlaces alfa-1,6 de los puntos de ramificación no se alteran. El producto final de la acción de la alfa-amilasa sobre el almidón es la formación de dextrinas, maltosas y algunas moléculas de glucosa. El pH óptimo al cual actúa es 6.9 a 7 y se requiere cloro para su activación. En la práctica la actividad enzimática se medirá por la desaparición del sustrato (disminución de la turbidez en los tubos que contienen almidón), la cual se determinará en el espectrofotómetro a 650 nm. EXPERIMENTO A

EFECTO DE LA CONCENTRACIÓN DE LA ENZIMA, DE LA TEMPERATURA Y

DEL ION CLORO SOBRE LA ACTIVIDAD DE LA AMILASA SALIVAL

  1. Preparar los siguientes tubos: Tubos No. I II III IV V VI VII-C Solución almidón 1% 1 ml 1 ml 1 ml 1 ml 1 ml 1 ml 1 ml Buffer phosphate pH 6.6 5 ml 5 ml 5 ml 5 ml 5 ml 5 ml 5 ml Soluciòn salina (NaCl 1%) 2.8 ml 2.6 ml 2.4 ml 2. ml

ml 2.2 ml Agua destilada --- --- --- --- 2. ml

  1. Colocar los tubos I al V en un baño de agua a 37°C, durante 5 minutos. El tubo VI servirá de comparación para ver el efecto de la temperatura sobre la acción enzimática por lo que se deja a temperatura ambiente.
  2. Agregar la solución de enzima:

Tubos No. I II III IV V VI VII-C Solución amilasa 0.4 ml 0.8 ml 1.2 ml 1. ml

ml

ml

  1. Colocar nuevamente los tubos I al V en baño de agua a 37°C durante 20 minutos, el tubo VI se mantiene a temperatura ambiente.
  2. Luego hacer el control final de la reacción con el reactivo de yodo, de la siguiente manera: Tubos No. I II III IV V VI VII-C HCl 0.05 N 5 ml 5 ml 5 ml 5 ml 5 ml 5 ml 5 ml de los tubos de reacción correspondientes agregar 0.5 ml 0.5 ml 0.5 ml 0. ml

ml

ml 0.5 ml Solución yodada 0.5 ml 0.5 ml 0.5 ml 0. ml

ml

ml 0.5 ml

  1. Mezclar y dejar en reposo por 10 minutos.
  2. Leer las absorbancia al espectrofotómetro a 650 nm.
  3. La diferencia de las absorbancia entre los tubos nos indicará la actividad enzimática para cada tubo.
  4. Graficar en papel milimetrado: Actividad enzimática en el eje Y vs concentración de la enzima [E] en el eje X. EXPERIMENTO B

EFECTO DE LA CONCENTRACIÓN DEL SUSTRATO SOBRE LA ACTIVIDAD

DE LA AMILASA SALIVAL

  1. Preparar los siguientes tubos: Tubos No. I II III IV V Solución de almidón 1% 1 ml 2 ml 3 ml 4 ml 5 ml Buffer phosphate pH 6.6 2 ml 2 ml 2 ml 2 ml 2 ml Solución salina (NaCl 1%) 2 ml 2 ml 2 ml 2 ml 2 ml Agua destilada 5 ml 4 ml 3 ml 2 ml 1 ml
  2. Mezclar bien los tubos. Hacer un control con la solución yodada con todos los cinco tubos de la misma manera que se hizo en el experimento anterior y leer las absorbancia de dichos controles a 650 nm. Dichas absorbancia se tomarán como lecturas iniciales.
  3. Luego añadir 1 ml de solución de enzima a cada tubo y colocarlos en el baño de agua a 37°C por 20 minutos.

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FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD

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CURSO: BIOQUÍMICA Y NUTRICIÓN

PRÁCTICA No 4 EVALUACIÓN NUTRICIONAL BIOQUÍMICA Y ANTROPOMETRICA La evaluación nutricional es parte de la evaluación integral del estado de salud de un individuo. Es un requisito indispensable siempre que se desea mejorar, promover o mantener un buen rendimiento físico, un buen estado de salud y nutrición, además de dar una idea más exacta del nivel de rendimiento que se tiene y que se puede alcanzar. El objetivo general de la práctica es determinar el estado nutricional mediante un diagnóstico que permita conocer el nivel nutricional actual, sobre todo aquellos mas frecuentes en nuestro medio como el Marasmo y el Kwashiorkor. ESTADO NUTRICIONAL: Es la condición de salud resultante en el tiempo, del balance entre lo consumido y lo requerido, dependiendo de la Edad, Sexo, Peso, Talla, etc. De cada persona. Es necesario considerar la calidad y cantidad de los nutrientes consumidos y la utilización de estos en el organismo. EVALUACIÓN NUTRICIONAL: Emplearemos métodos Antropométricos y Bioquimico-Antropometricos además del Balance Nitrogenado y Evaluación Inmunológica.

1. Evaluación antropométrica:

Emplearemos los Índices PESO/TALLA; Circunferencia del Brazo(CB); Circunferencia Muscular del Brazo (CMB); Espesor del Pliegue Cutáneo del Tríceps (EPCT); Índice de Masa Corporal (IMC); entre otros.

2. Evaluación bioquímica:

Utilizaremos la Proteína Total y la Albumina Séricas como índices de masa proteica visceral. El Balance Nitrogenado lo utilizaremos para evaluar los ingesta en relación con la excreción de Nitrógeno. Como Evaluador Bioquimico-Antropomedico (Mixto) utilizaremos el índice Creatinina Urinaria/Talla para la evaluación de la masa muscular esquelética.

3.Evaluacion Inmunológica:

Empleando los TEST de Hipersensibilidad Cutánea Retardada: Tuberculina, Candidina, etc.

3. Evaluación Clínica:

Diferenciaremos el Marasmo del Kwashiorkor en sus mas importantes diferencias Bioquímicas y Clínicas. EXPERIMENTO “A” EVALUACIÓN DE LA MASA PROTEICA VISCERAL DETERMINACIÓN DE PROTEINAS Y ALBÚMINA EN SUERO FUNDAMENTOS DEL METODO: Los enlaces peptídico de las proteínas reaccionan en un medio alcalino con el ion cúprico del reactivo de Biuret, estabilizado por tartrato, para formar un complejo de color violeta cuya máxima absorción se da a 540 nm. NaOH Cobre + proteína Complejo cupro-proteico El dosaje de proteínas totales tiene poco valor como prueba aislada porque la alteración en una de las fracciones puede ser balanceada por una alteración opuesta de otra fracción. Por lo tanto, es importante que adicionalmente se determine la concentración de albúmina. La albúmina tambièn va a ser dosada por el método de Biuret, pero previamente al suero se le hace un tratamiento con sulfato de sodio y eter etílico para lograr la separación de las globulinas y permitir solo el dosaje de albúminas.

CALCULOS: Calcular la concentración de albúmina (en g/dl) utilizando el método del Factor de Calibración, en forma similar que para el caso de las proteínas totales. P.T.(g/dl) PROTEINAS TOTALES (g/dl) =-------------------------- S Alb. (g/dl) ALBUMINA (g/dl) =------------------------------ S Albumina (g/dl) RELACION A/G =--------------------------------------- P.T. (G/DL) – Alb. (g/dl) VALORES NORMALES: Proteínas Totales= 6.1 – 7.9 g/dl. Albúmina = 3. 5 – 4.8 g/dl. Relación A/G = 1,2 a 2, CUESTIONARIO. - 1.- Diga Ud. Como se evalúa la masa Proteica Visceral? 2.- Que cosa es la Presión Oncotica de las Proteínas y como explica Ud. El Edema por Desnutrición. 3.- Que tipo de Trastornos Nutricionales conoce según lo explicado en clases? 4.- Investigue la importancia nutricional que tiene la Transferrina, pre albúmina y proteína transportadora de retinol plasmática. 5.- Qué es el Índice de Masa Corporal, como se calcula, valores normales e interpretación?

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CURSO: BIOQUÍMICA Y NUTRICIÓN

PRÁCTICA No 5 DETERMINACIÓN DE LA GLICEMIA, INVESTIGACIÓN DE GLUCOSURIA El mantenimiento de la glicemia, o concentración plasmática de glucosa, en los organismos superiores es fundamental para el funcionamiento de todos los órganos, al ser la glucosa un metabolito energético principal. La coordinación de los procesos metabólicos implicados en este cometido se lleva a cabo por la relación insulina/glucagón. La ingestión de glucosa o sustancias que la produzcan (almidón, fructosa, galactosa, proteínas, pero no grasas) va seguida, en las personas sanas, por un aumento de la glucosa en sangre. Este aumento origina la puesta en marcha del mecanismo regulador: aumento de la utilización de glucosa (por glucólisis , entre otras), aceleración de la Gluconeogénesis y disminución de la glucogenólisis ; todo ello ocurre principalmente mediante la secreción de insulina, una hormona pancreática de tipo polipeptídico. En el caso de que la producción de insulina esté disminuida, la glucosa no puede ser utilizada por las células, lo cual ocasiona niveles elevados de glucosa en sangre ( hiperglucemia ); así ocurre en las personas que sufren diabetes del tipo denominado "dependiente de insulina" o "tipo I". El diagnóstico de la diabetes dependiente de insulina es sencillo y se basa en antecedentes, síntomas clínicos y comprobación de una hiperglucemia significativa.