Aulas práticas de anatomia vegetal, Resumos de Anatomia

Baixe Aulas práticas de anatomia vegetal e outras Resumos em PDF para Anatomia, somente na Docsity!

INSTITUTO FEDERAL DO ESPIRITO SANTO

ANATOMIA VEGETAL

AULAS PRÁTICAS

Profa. Maria Tereza Ferreira de Morais

Aulas práticas de anatomia de raiz, caule, folha, flor, fruto e sementes.

Professora: Maria Tereza Ferreira de Morais

2

Para melhor aproveitamento das aulas práticas, recomenda-se adotar as seguintes normas:

1. Comparecer pontualmente, munido dos materiais relacionados abaixo;
2. Ler cuidadosamente o roteiro antes de sua execução;
3. Dividir o trabalho equitativamente com o(s) companheiro(s) do grupo;
4. Usar apenas o material necessário, evitando desperdícios e danos;
5. Antes de retirar-se, limpar o balcão de trabalho, lavar a vidraria e coloca- las em local adequado. Desligar o microscópio, protegendo-o com capa.

Material de uso pessoal:

 Jaleco branco  1(um) estiletes de ponta reta (pode ser feito com agulhas de seringas descartáveis),  1 pinça reta de ponta fina,  Lamina de barbear nova,  Lápis de cor, lápis ou lapiseira 2b e borracha.  Laminas e lamínulas para microscopia

Preparação do material

Para uma boa observação ao microscópico o material deve ser o mais transparente possível ou pelo menos, translúcido. As secções podem ser feitas a mão livre, usando-se lâminas de barbear (gilete) ou para estudos mais refinados, utilizando-se aparelhos especiais, os micrótomos_._

Tipos de corte : no estudo de determinado órgão vegetal é indispensável à utilização de cortes realizados em diferentes posições e em diferentes planos. Os mais comuns são:

Cortes transversais : feitos num plano perpendicular ao maior eixo do órgão;

Professora: Maria Tereza Ferreira de Morais

4

 Transferir os cortes selecionados para a lâmina, utilizando um pincel fino, e colocar a lamínula num ângulo aproximadamente de 45º graus, para evitar a formação de bolhas de ar;  Na realização de cortes paradérmicos, prender o material (geralmente folha) sobre o dedo indicador, firmando-o com os dedos polegar e médio, e realizar um corte superficial. Pode-se também fazer uma incisão pouco aprofundada e puxar com uma pinça;  Para seccionar folhas largas, pode-se dobrá-las várias vezes, conseguindo-se assim, grande número de cortes de uma só vez. Para observação ao microscópio, os cortes devem ser colocados entre lâmina e lamínula, imersos em líquido de montagem.

Técnicas de preparação de material

Para preparar material em lâminas é bom, sempre que possível, utilizar

plantas frescas, i.e., recém-coletadas, pois nestas observa-se melhor o conteúdo

célular, além de ser de manuseio mais fácil. Caso não haja, pode-se utilizar também

material seco de herbário ou fixado. Para os estudos histológicos é mais conveniente

fixar o material por meios químicos.

1. Material fresco : deve ser trazido ao laboratório em sacos plásticos fechados,

realizando-se os cortes em seguida, sem qualquer preparo prévio;

2. Material fixado : deve ser removido do vidro, com pinça e lavado em água

corrente, por meia hora, antes de ser manuseado;

3. Material herborizado : o material seco de herbário para ser utilizado em estudos

anatômicos, deve ser fervido em água por 5 a 15 minutos. Para facilitar a penetração

da água, pode-se adicionar algumas gotas de detergente. Após o resfriamento, o

material pode ser fixado.

Professora: Maria Tereza Ferreira de Morais

5

Introdução à histologia vegetal

O que move a ciência é a curiosidade do ser humano. Dentre inúmeras descobertas, o microscópio, merece nosso destaque porque foi este aparelho que permitiu aumentar a imagem de pequenos objetos. Essa invenção ocorreu, em 1591, graças aos holandeses Hans Janssen e seu filho Zacarias, fabricantes de óculos. No seu oficio eles ampliavam as imagens e observavam objetos muito pequenos por meio de duas lentes de vidro montadas nas extremidades de um tubo. Posteriormente, o holandês Antonie van Leewenhoek construiu microscópios de apenas uma lente, pequena e quase esférica, entre duas placas de cobre, aperfeiçoando o instrumento. Ele foi o primeiro a utilizar o microscópio visando o entendimento da natureza e por isso estudou materiais como água estagnada, embriões de plantas, sangue, esperma e visualizou micro-organismos. Com essas descobertas, Robert Hooke foi encarregado de construir um microscópio ainda mais poderoso. Ele desenvolveu um aparelho com duas lentes ajustadas nas extremidades de um tubo de metal. E por possuir duas lentes, a ocular e a objetiva, ficou conhecido como microscópio composto. Com isso, novas pesquisas foram realizadas e a tecnologia aprimorada. Atualmente, os aparelhos utilizados nos laboratórios de biologia de escolas e universidades são, na maioria, microscópios ópticos ou fotônicos, que utilizam luz. Eles possuem dois conjuntos de lentes de vidro ou de cristal, e geralmente fornecem ampliações de 100 a 1000 vezes. A luz, projetada através do objeto em observação, atravessa as lentes da objetiva e chega ao olho do observador. Utiliza-se então um micrômetro e um macrômetro para focalizar o objeto fracionado na lâmina estudada e o charriot para efetuar a varredura, que é a visualização dos diferentes campos de uma lâmina. Para a melhor utilização do microscópio, diversas técnicas foram formalizadas e inovações foram feitas. Corantes, fixadores, micrótomo, esfregaço, esmagamento. Há também os microscópios eletrônicos, que permitem o estudo mais detalhado da estrutura interna da célula, podendo proporcionar aumentos de 5 mil e 100 mil vezes. No microscópio eletrônico de transmissão há, em vez de luz, um feixe de elétrons que atravessa o material biológico, produzindo a imagem. Já o microscópio eletrônico de varredura por meio também de elétrons, estuda-se detalhes de superfícies de objetos sólidos.

Professora: Maria Tereza Ferreira de Morais

7

desligar a luz, enrolar o fio e cobrir o microscópio. • Se a lente de maior aumento (100x) foi utilizada- deve ser limpa usando um lenço de papel.

Professora: Maria Tereza Ferreira de Morais

8

Relatório deve conter:

1. Introdução (objetivo da aula pratica)
2. Material utilizado
3. Procedimento experimental (como foi realizado o experimento)
4. Resultados e discussão 1. INTRODUÇÃO

Instrumento utilizado para ampliar, através de uma série de lentes, estruturas impossíveis de serem observadas a olho nu. Constituído por uma parte mecânica, que serve de suporte, e uma parte óptica, que é constituída por três sistemas de lentes: condensador, objetiva e ocular. A ampliação total dada por um microscópio é igual ao aumento da objetiva multiplicado pelo aumento da ocular.

 O objetivo da pratica foi identificar componentes das partes mecânica e óptica do microscópio óptico.

2. MATERIAIS UTILIZADOS  Microscópio óptico  Lâminas  Lamínulas 3. METODOLOGIA (PROCEDIMENTO EXPERIMENTAL)  Identificar componentes da parte mecânica e óptica do microscópio.  Colocar em uma lâmina preparada  Focalizar no aumento de 10x. Mexer o “charriot” para esquerda e para direita, para frente e para trás. Focalizar nas objetivas de maior aumento 4. RESULTADO E DISCUSSÃO (OBSERVAÇÃO E CONCLUSÃO)

 O que foi observado no microscópio?  Em qual situação é mais conveniente utilizar o aumento de 10x, e em qual é melhor utilizar o de 40x?

Professora: Maria Tereza Ferreira de Morais

10

1. Introdução

Para uma boa observação ao microscópio o materia deve ser o mais transparente

possivel ou pelo menos, translúcido. As secções podem ser feitas a mão livre, usando – se

lâminas de barbear ou para estudos mais refinados, utilizando – se aparelhos especiais, os

micrótomos. Tipos de corte: no estudo de determinado orgão vegetal é indispensavel a

utilização de cortes realizados em diferentes posições e em diferentes planos. Os mais

comuns são:

Cortes Transversais: Feitos num plano perpendicular ao maior do orgão; Cortes

Longitudinais: Feitos num plano paralelo ao maior eixo do orgão;

Corte Paradérmico: Cortes superficiais, feitos num planoparalelo á superficie do orgão,

sendo utilizados principalmente no estudo de orgãos laminares.

Para a obtenção de bons cortes (suficientemente finos) há necessidade de prática,

porém, seguindo-se algumas regras básicas o principiante poderá obter bons resultados:

 Sempre utilizar lâminas de barbear (gilete) novas;

 Antes de iniciar os cortes, tornar plana a superficie da peça a ser cortada;

 Molhar a gilete e o material, antes de cortar;

 Se o material for resistente, prendê-lo entre o polegar e o indicador, na orientação

desejada, fazendo a gilete deslizar suave e continuamente sobre a superficie do material,

sem aprofundar, para a obtenção de cortes finos;

 Materiais delicados ou muito pequenos necessitam de um suporte para que possam

ser cortados. Pode-se utilizar pedaços de cenouras, medula de embaúba, girassol, ou

sabugueiro e cilindros de cortiça ou de isopor.

 Fazer grandes numeros de cortes, colocando-os em um vidro de relógio ou placa de

Petri contendo aguae, a seguir selecionar os mais finos.

 Transferir os cortes selecionados para a lâmina, utilizando um pincel fino, e colocar a

laminula num angulo aproximadamente 45º graus, para evitar a formação de bolhas de ar.

 Na realização de cortes paradérmicos, prender o material(geralmente folha) sobre o

dedo indicador, firmando – o com o dedo polegar e medio, e realizar um corte superficial.

Pode-se tamben fazer uma incisão pouco aprofundada e puxar com uma pinça.

Professora: Maria Tereza Ferreira de Morais

11

 Para seccionar folhas largas, pode-se dobra-las varias vezes, conseguindo-se assim,

grande numero de cortes de uma só vez.

 Para obtenção ao microscópio, os cortes devem ser colocados entre lâmina e

laminula, imersos em liquido de montagem.

Objetivo

 Confeccionar cortes a mão livre a partir de folhas e classificar as estruturas observadas no

órgão vegetativo.

Professora: Maria Tereza Ferreira de Morais

13

2. Destaque a epiderme inferior (abaxial) de Tradeschantia sp, monte em água e observe. Desenhe uma célula no maior aumento. Qual a diferença em relação à célula da cebola? Quais as estruturas comuns?

3. Folha de Sansevieria sp (espada de São Jorge). Faça cortes transversais, monte alguns em azul de metileno e deixe corar. Enquanto isto observe as células epidérmicas em outros cortes montados em água. Compare os cortes com e sem corante e desenhe algumas células epidérmicas. Que nome recebe esta modificação da parede celular? Essa modificação ocorre igualmente em todas as faces das células?

Sem corante Com corante

Professora: Maria Tereza Ferreira de Morais

14

4. Faça cortes paradérmico da epiderme abaxial de Tradeschantia sp coloque-a em solução sacarose a 10%, espere 5’ e observe. O que ocorre com a célula? Por que a coloração do suco celular torna-se mais intensa?

Sem sacarose Com Sacarose

Professora: Maria Tereza Ferreira de Morais

16

2. Daucus carota (cenoura). Monte cortes longitudinais em solução de sacarose 5%. Observe os plastos e desenhe alguns no maior aumento.

3. Faça cortes paradérmico bem finos na periferia do tubérculo de Solanum tuberosum (Solanaceae, batata inglesa) e monte em água. Observe e desenhe alguns grãos de amido simples, compostos e semi-compostos. Substitua a água por lugol e observe. Também há pequenos cristalóides cúbicos de proteínas nas células que ficam logo abaixo da região suberificada do tubérculo.

Com água Com Lugol

Professora: Maria Tereza Ferreira de Morais

17

4. Semente de Phaseolus vulgares (Leg-Fabacea, feijão). Abra a semente longitudinalmente, raspe o cotilédone com a gilete e monte em água. Observe e desenhe.

5. Látex de Euphorbia splendens (Euphorbiaceae coroa de cristo). Corte uma folha ou extremidade de ramo e deixe pingar uma gota de látex sobre a lâmina. Adicione 1 gota de lugol, cubra com lamínula e observe os grãos de amido.

Professora: Maria Tereza Ferreira de Morais

19

8. Observe e esquematize o cistólito ( Ficus sp- figo) e ráfides ( Dieffenbachia picta- comigo ninguém pode ) nas lâminas permanentes.

Figo Comigo ninguém pode

Professora: Maria Tereza Ferreira de Morais

20

AULA PRÁTICA 3: EPIDERME, TRICOMAS.

1. Caule de Cucurbita pepo (abóbora). Faça cortes transversais e pingue 1 gota de floroglucina(1% de 1,3,5 trihidroxibenzol). Espere 1’ e em seguida pingue uma gota de HCl(36,5 a 38%) concentrado. Monte em água e observe as células que aparecem coradas. O que indica o teste de floroglucinol?

2. Caule de Pelargonium sp (gerânio). Faça cortes transversais e monte alguns em Lugol. Enquanto isto observe outros cortes em água. Desenhe algumas células da periferia do corte, cujas paredes são suberificadas. Por que a cutina e a suberina apresentam a mesma coloração quando tratadas com Lugol?